Puce switchSENSE

Plateforme ASIA : Approches fonctionnelles et Structurales des InterActions cellulaires

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Présentation

L’idée de mettre en commun certains équipements lourds dans le cadre d’une plateforme expérimentale localisée sur le site de la Faculté des Sciences et Technologies à Nancy a émergé peu de temps après la création de l’Université de Lorraine (UL) en 2012 dans le cadre du contrat de plan Etat/Région (CPER) FORBOIS et du Fonds européen de développement régional (FEDER).

A partir de 2017, la construction de cette plateforme a connu un nouvel essor. Ainsi quatre unités de recherche (UMR 1136 IAM, UMR 1128 DynAMic, UMR 1434 SILVA et USC INRAE 340 L2A) ont mis en commun des moyens humains et financiers pour structurer la plateforme.

ASIA « Approches fonctionnelles et Structurales des InterActions cellulaires », est une plateforme scientifique qui a pour objectif de rendre accessibles des ressources technologiques de pointe et d’apporter une expertise de haut niveau aux usagers. La plateforme accueille notamment des étudiants de différentes formations de l’Université de Lorraine.

Elle s’est dotée d’équipements permettant l’étude de la régulation des activités biologiques et physiologiques des protéines ainsi que l’étude des interactions cellulaires. Les outils disponibles sur la plateforme permettent d’aborder ces questions à différents niveaux.

Rattachée au pôle scientifique A2F, la plateforme ASIA est accessible à tout utilisateur quel que soit son rattachement (organismes publics, entreprises…). 

Trouvez l’outil qu’il vous faut !

Depuis 2017 la plateforme ASIA met en place une démarche qualité visant à satisfaire les exigences du référentiel du programme INFRA+ de l’Université de Lorraine. Ceci est fait dans un souci d’amélioration continue. Le 05 mars 2021 la plateforme ASIA a obtenu le label StAR-LUE (Structure d’appui à la recherche, Lorraine Université d’Excellence), gage de qualité pour les utilisateurs de la plateforme.

switchSENSE® heliX+

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La technologie switchSENSE® utilise une biosurface électrocommutable pour permettre aux chercheurs de caractériser les interactions entre les molécules en temps réel. Cette technologie se distingue des méthodologies existantes en ce sens qu’elle combine une cinétique de haute sensibilité avec des informations structurelles sur la taille, la forme et la conformation, ce qui permet d’approfondir et de mieux comprendre l’interaction. Les études sont réalisées sur une biopuce réutilisable, générée à l’aide de méthodes de couplage et d’hybridation habituelles. Sur cette biopuce, des leviers d’ADN sont connectés à une série d’électrodes en or. Ces nano-leviers servent soit de cible pour les interactions moléculaires elles-mêmes, soit contiennent d’autres partenaires d’interaction. Pour caractériser les interactions, l’instrument DRX est utilisé pour provoquer un mouvement délibéré de ces nano-leviers de haut en bas en modifiant la tension électrique à la surface recouverte d’une couche d’or. Lorsque des interactions se produisent, ces mouvements sont affectés par les forces de frottements plus ou moins importantes et sont détectés par mesure de la fluorescence émise par un fluorophore fixé à l’extrémité libre des nano-leviers. La mesure de la relaxation de fluorescence est utilisée dans le calcul des informations cinétiques et biophysiques.

Pour de plus amples informations, veuillez consulter le site www.dynamic-biosensors.com

switchSENSE® DRX

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La technologie switchSENSE® utilise une nouvelle biosurface électrocommutable pour permettre aux chercheurs de caractériser les interactions entre les molécules en temps réel. Cette technologie se distingue des méthodologies existantes en ce sens qu’elle combine une cinétique de haute sensibilité avec des informations structurelles sur la taille, la forme et la conformation, ce qui permet d’approfondir et de mieux comprendre l’interaction. Les études sont réalisées sur une biopuce réutilisable, générée à l’aide de méthodes de couplage et d’hybridation habituelles. Sur cette biopuce, des leviers d’ADN sont connectés à une série d’électrodes en or. Ces nano-leviers servent soit de cible pour les interactions moléculaires elles-mêmes, soit contiennent d’autres partenaires d’interaction. Pour caractériser les interactions, l’instrument DRX est utilisé pour provoquer un mouvement délibéré de ces nano-leviers de haut en bas en modifiant la tension électrique à la surface recouverte d’une couche d’or. Lorsque des interactions se produisent, ces mouvements sont affectés par les forces de frottements plus ou moins importantes et sont détectés par mesure de la fluorescence émise par un fluorophore fixé à l’extrémité libre des nano-leviers. La mesure de la relaxation de fluorescence est utilisée dans le calcul des informations cinétiques et biophysiques.

Pour de plus amples informations, veuillez consulter le site www.dynamic-biosensors.com

ITC

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La technologie isothermal titration calorimetry ou ITC (appareillage MicroCal ITC200) est utilisée dans les études quantitatives d’une grande variété d’interactions biomoléculaires (assemblages de macromolécules telles que protéines ou acides nucléiques, interaction protéines/petites molécules…). Elle permet de mesurer l’affinité des partenaires de liaison dans leur état natif. Elle
repose sur une mesure directe de la chaleur libérée ou absorbée durant un événement de liaison entre biomolécules. La mesure du transfert thermique durant la liaison permet une détermination précise de la constante d’affinité (KA = 1/KD), de la stœchiométrie (n), de l’enthalpie (∆H) et de l’entropie (-TΔS) de la réaction et donc l’énergie libre de Gibbs du système biologique (∆G0). Ceci fournit un profil thermodynamique complet des paramètres de l’interaction moléculaire. Cette technologie est complémentaire de la technologie switchSENSE® également disponible sur la plateforme.

lc-ms analytique

LC-MS analytique-min

Référente : Audrey BERTHE

L’activité enzymatique des protéines peut être analysée au moyen de la technologie High Performance Liquid Chromatography ou HPLC (appareillage Acquity Arc) couplée à une détection de
spectrophotométrie de masse (appareillage Acquity QDa) en dosant et identifiant certains produits formés lors de la réaction. La technologie UHPLC (pour ultra-high performance liquid chromatography) fonctionne avec des colonnes remplies de particules de silice de diamètres sub-2 µm et à des hautes pressions de 600-650 bar. Elle offre ainsi une résolution nettement supérieure à celle de l’HPLC classique (100-150 bar). L’UHPLC est donc une technologie tout-à-fait adaptée au fractionnement de mélanges complexes. Elle permet la séparation et le dosage de nombreux métabolites issus du métabolisme primaire et secondaire (acides aminés, glucides, composés aromatiques, acides organiques) ou impliqués dans les mécanismes de détoxication cellulaire (antioxydants comme l’ascorbate, le glutathion, etc.). Les protéines et leurs produits de dégradation (peptides) peuvent également être séparés et dosés. L’Acquity-Arc ne permet cependant pas de collecter des fractions en sortie de colonne.

 

lc-ms préparative

LC-MS préparative-min

Référente : Tiphaine DHALLEINE

L’activité enzymatique des protéines peut être analysée au moyen de la technologie High Performance Liquid Chromatography ou HPLC (appareillage Acquity Arc) couplée à une détection de
spectrophotométrie de masse (appareillage Acquity QDa) en dosant et identifiant certains produits formés lors de la réaction. La technologie UHPLC (pour ultra-high performance liquid chromatography) fonctionne avec des colonnes remplies de particules de silice de diamètres sub-2 µm et à des hautes pressions de 600-650 bar. Elle offre ainsi une résolution nettement supérieure à celle de l’HPLC classique (100-150 bar). L’UHPLC est donc une technologie tout-à-fait adaptée au fractionnement de mélanges complexes. Elle permet la séparation et le dosage de nombreux métabolites issus du métabolisme primaire et secondaire (acides aminés, glucides, composés aromatiques, acides organiques) ou impliqués dans les mécanismes de détoxication cellulaire (antioxydants comme l’ascorbate, le glutathion, etc.). Les protéines et leurs produits de dégradation (peptides) peuvent également être séparés et dosés. 

chromatographie Flash

Chromatographie flash-min

La Flash chromatography (appareillage PuriFlash XS420) est une technique utilisée pour fractionner un échantillon brut (milieu de culture, extraits végétaux, matrices alimentaires en solution…) et
obtenir des fractions fortement enrichies en un composé présentant une activité biologique donnée. C’est une technique de séparation simple et rapide. La Flash chromatography est basée sur l’interaction entre les composés que l’on souhaite séparer, la phase stationnaire (billes de silice greffées ou non) et la phase mobile (solvant aqueux ou organique). La pression nécessaire est faible (moins de 20 bar) comparé à l’HPLC où elle est supérieure à 100 bar.

SEC-MALS

SEC-MALS-RI, appareil permettant la mesure du poids moléculaire d'une molécule

Référente : Tiphaine DHALLEINE

La diffusion de la lumière multi-angle ou MALS (détecteur miniDAWN TREOS II) couplée à un système FPLC (appareillage ÄKTA-purifier) est une technique d’analyse spectroscopique non destructive permettant de réaliser une mesure de la masse moléculaire des molécules éluées (protéines et éventuellement acides nucléiques), de suivre la qualité d’une purification, de mesurer la stœchiométrie de complexes macromoléculaires, de mesurer l’état d’oligomérisation, de suivre l’homogénéité de la taille de la molécule éluée, de suivre d’éventuels changements de conformation en présence d’effecteurs. Elle permet également de mettre en évidence les changements conformationnels éventuels de la molécule étudiée (outil analytique puissant pour les complexes et les protéines modulaires) et enfin d’obtenir des données structurales sur les interactions entre molécules en solution.

FPLC ÄKTA pure

Chromatographe AKTA pure, appareil permettant de faire de la chromatographie de manière automatisée.

La technologie Fast Protein Liquid Chromatography ou FPLC (appareillages ÄKTA-purifier et ÄKTA-pure 25L) permet la séparation de macromolécules telles que les protéines (naturelles ou recombinantes) et les acides nucléiques. Des colonnes analytiques ou préparatives peuvent être utilisées. Cette technologie préserve le caractère natif des protéines et leur activité biologique potentielle, car il est spécialement conçu en matériaux inertes (verre, téflon, tubes en PEEK) et fonctionne avec des contre-pressions moyennes (1 MPa ou 10 bar). Les techniques les plus utilisées sont l’échange d’anions ou de cations, l’interaction hydrophobe, la filtration sur gel (ou exclusion stérique SEC), la chromatographie d’affinité à l’ion nickel immobilisé pour les protéines His-taguées (IMAC).

Station bio-informatique

Station bioinformatique, ordinateur permettant l'analyse de grands jeux de données ou d'utiliser des logiciels d'analyse bioinformatique de pointe.

Référent : Sylvain Darnet

Station de travail tour

Precision 3660

Base : Precision 3660, base BTX

Processeur : Processeur Intel Core I9-13900K de 13e génération (cache 36 Mo, 24 cœurs, 32 threads, 3,00 GHz à 5,80 GHz Turbo, 125W)

Système d’exploitation : Windows 11 Professionnel, anglais, néerlandais, français, allemand, Italien,

Option de châssis : Precision 3660 Tour avec bloc d’alimentation 1000 W (80 Plus platinium), compatible RPL et ADL, V2

Carte vidéo : Carte graphique intel intégrée

Thermal Coolin : Refroidisseur d’air thermique de processeur avancé

Mémoire : 32 Go (2 x 16 Go) de mémoire DDR5 UDIMM non ECC jusqu’à 4400 MHz

Storage Configuration (Boot Drive) : C5 : disque SSD M.2 en option + disque du SATA 3,5°

1st M.2 NVMe SSD : Disque SSD M.2 PCle NVMe classe 40 de 1 To

Additional M.2 NVMe SSD : Double disque SSD M.2 PCle NVMe classe 40 de 1 To

Disque dur : pas de disque dur

Disque dur supplémentaire : Disque dur SATA 3,5 pouces de 4 To à 5400 tr/min

3rd Hard Disk Drive : Pas de disque dur

Connectivité RAID : Sans RAID SATA

Lecteur optique : Lecteur de DVD+/-RW 8x 9,5 mm

Logiciel optique : Logiciel Cyberlink Media Suite Essentials pour Windows 10 et lecteur DVD (sans support)

Additional Network Add-in-cards : Aucune carte reseau supplémentaire sélectionnée (carte d’interface réseau intégrée incluse)

Sans fil : Aucune carte LAN sans fil incluse (aucune connectivité WI-FI)

Pilote pour technologie sans fil : Pas de carte réseau LAN sans fils

PCle I/O Add-in-cards : Non sélectionné dans cette configuration

Optional Integrated Video or USB Ports : DisplayPort supplémentaire

Haut-parleurs : haut-parleur intégré pour Precision 3660

Capot arrière : Aucune gaine de câble sécurisée incluse

Ecran incurvé 49 pouces, Haute résolution

Logiciel : XL Stat

Néphélomètre

Néphélomètre, appareil permettant la mesure de la turbidité d'un échantillon.

Pour le criblage à haut débit (en microplaque) de la croissance microbienne, la solubilité des molécules et la cinétique de liaison des protéines.

Spectromètre à fluorescence

Spectromètre à fluorescence, Appareil permettant la mesure de fluorescence d'un échantillon.

Un spectromètre à fluorescence permet de mesurer la fluorescence réémise à une longueur d’onde donnée.

Lecteur de microplaques

Lecteur de microplaque Ensight, appareil permettant la lecture de microplaques en UV, densité optique ou fluorescence.

Le lecteur de microplaque (6 à 384 puits) permet des mesures d’absorbance entre 230-800 nm et de fluorescence entre 203-800 nm. Il permet de réaliser des spectres d’absorption et des spectres d’excitation et d’émission de fluorescence.

ultracentrifugeuse

Ultracentrifugeuse, appareil permettant la centrifugation à haute vitesse d'échantillons.

Référent : Badreddine DOUZI

Séparation de macromolécules (acides nucléiques, lipoprotéines, etc.) et des organites cellulaires par accélération centrifuge (5000 g à 100 000 g).

Auto-échantillonneur HPTLC

Déposeur automatique HPTLC, appareil permettant de déposer les expériences de chromatographie sur couche mince de manière fine et régulière.
Référent : Sylvain Darnet
 
Auto-échantillonneur de laboratoire ATS 4 de la marque Camag est un dispositif pour l’application entièrement automatisée d’échantillons sur des plaques TLC et HPTLC. Les échantillons peuvent être appliqués sous forme de bandes, de points ou de rectangles. L’application automatique des échantillons est un facteur clé pour la productivité du laboratoire HPTLC. L’ATS 4 offre une application d’échantillons entièrement automatique pour les analyses qualitatives et quantitatives ainsi que pour les séparations préparatives. Il est adapté à une utilisation de routine et à un débit d’échantillons élevé. Caractéristiques principales Application d’échantillons entièrement automatisée Application de bandes, de points ou de rectangles Tout format de plaque jusqu’à 20 x 20 cm Application par pulvérisation ou par transfert par contact Contrôlé par le logiciel visionCATS Buse de pulvérisation chauffée (option) Fonctionnement de l’ATS 4 avec visionCATS L’application précise de l’échantillon est un facteur crucial pour la qualité de l’analyse HPTLC. En utilisant le logiciel visionCATS HPTLC pour contrôler l’ATS 4, une application d’échantillon entièrement automatisée pour une utilisation de routine et un débit d’échantillon élevé est supportée. La boîte de dialogue pour les paramètres de l’instrument offre des combinaisons par défaut faciles à utiliser. Par exemple, en sélectionnant le type de solvant le plus similaire au solvant réellement utilisé, le logiciel adapte automatiquement les paramètres par défaut de l’instrument en fonction de la viscosité, de la volatilité et de la tension superficielle. La qualité de remplissage/rinçage qui détermine la fréquence de rinçage de la seringue, la répétition du processus de remplissage, etc. peut être ajustée individuellement à une tâche spécifique. Le tableau des échantillons est clairement agencé et facile à utiliser. La progression de l’application est affichée à l’écran tant que l’instrument reste connecté à l’ordinateur. Spécifications techniques Support d’objets Pour les objets jusqu’à 20 x 20 cm.

Dérivatiseur HPTLC

Dérivatiseur HPTLC, appareil permettant de révéler les expériences de chromatographie sur couche mince par pulvérisation d'un révélateur de manière homogène.

Référent : Sylvain Darnet

Automate de dérivatisation Chromajet DS20 Bionis.

La pulvérisation assure la maîtrise de l’étape de révélation.

Le ChromaJet DS 20 permet de pulvériser les réactifs de dérivatisation sur des zones très précises définies par l’utilisateur. Cette technologie, unique sur le maché, assure à l’utilisateur des économies substantielles en consommation de réactifs.

Grâce au système fermé du Chromajet DS20 l’utilisateur travaille en toute sécurité.

Concentrateur sous vide

Concentrateur sous vide miVac, appareil permettant l'évaporation de solvant.

La concentration par centrifugation sous vide (appareillage miVAC) permet d’éliminer rapidement le solvant organique des échantillons.

Lyophilisateur

Lyophilisateur Benchtop, appareil permettant et lyophiliser des échantillons par sublimation.

La lyophilisation consiste à enlever l’eau d’un produit liquide, pâteux ou solide par sublimation.

Broyeur cryogénique

Broyeur cryogénique CryoMill, appareil permettant de broyer des échantillons à froid grâce à l'azote liquide.

Grâce au système de refroidissement intégré (azote liquide à -196°C), le bol de broyage est continuellement refroidi à l’azote liquide avant et pendant le broyage. L’échantillon (aliments, bois, boue, morceaux de plantes, semences oléagineuses, sols, textiles…) est ainsi fragilisé et les composants volatils sont conservés.

Soxtherm

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L’extraction par solvant de petites molécules (hydrocarbures aromatiques polycycliques, métabolites, polymères glucidiques, terpènes, polyphénols, alcaloïdes…) est une méthode classique d’extraction solide-liquide. L’échantillon entre rapidement en contact avec le solvant organique pur, ce qui permet de déplacer l’équilibre de transfert vers le solvant. Elle ne nécessite pas de filtration après l’extraction et peut être utilisée quelle que soit la matrice végétale.

La plateforme ASIA dispose également de trois Soxhlets (dispositifs d’extraction non automatisés).

Fibrebag

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Détermination des fractions de fibres végétales et alimentaires.

qPCR CFX96 et 384

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Reference : Emilie PIOTROWSKI

Développement d’amorces ; détection de mutations ponctuelles ; détermination des OGM dans les produits destinés à la consommation humaine ; détection spécifique et sensible des agents pathogènes et quantification de la charge bactérienne, virale ou parasitaire.

Publications impliquant la plateforme

Lors de la valorisation de vos projets scientifiques (articles, posters, présentations), pensez à remercier la plateforme ASIA,
que le personnel soit co-auteur ou non. Afin de faciliter le contrôle des publications impliquant la plateforme, merci d’utiliser la formulation suivante :
“This work benefited from the ASIA platform (Université de Lorraine-INRAE; https://a2f.univ-lorraine.fr/en/asia-2/).”
N’oubliez pas de transmettre au responsable opérationnel une copie PDF de votre production scientifique. Merci !

Pour les publications récentes le lien sera mis à jour prochainement

Cliquez sur le logo pour accéder aux publications :

Baratzhanova, G., Girardet, J.-M., Fournier, A., Djansugurova, L., & Cakir-Kiefer, C. (2024). Application of the switchSENSE® technology for real-time study of pesticides interaction with biological molecules. BIO Web of Conferences, 100, 03003. https://doi.org/10.1051/bioconf/202410003003

Bjørlie, M., Irankunda, R., Yesiltas, B., Sørensen, A.-D. M., Girardet, J.-M., Boschi-Müller, S., Jacobsen, C., & Canabady-Rochelle, L. (2024). Metal-chelating antioxidant peptides—Biosensor screening methods as alternatives to the ferrozine assay. https://doi.org/10.22541/au.171223997.71294832/v1

Irankunda, R., Camaño Echavarría, J. A., Paris, C., Selmeczi, K., Stefan, L., Boschi-Muller, S., Muhr, L., & Canabady-Rochelle, L. (2024). Deciphering Interactions Involved in Immobilized Metal Ion Affinity Chromatography and Surface Plasmon Resonance for Validating the Analogy between Both Technologies. Inorganics, 12(1), 31. https://doi.org/10.3390/inorganics12010031
 

Bchini, R., Darnet, S., De Butler, A., Doan, A., Oliveira-Correia, L., Navarro, D., Record, E., & Morel-Rouhier, M. (2024). Responses to and detoxification of esculin in white-rot fungi. Fungal Biology, S1878614623001393. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2023.12.008

 

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Safran J., Tabi W., Ung V., Lemaire A., Habrylo O., Bouckaert J., Rouffle M., Voxeur A., Pongrac P., Bassard S., Molinié R., Fontaine J.-X., Pilard S., Pau-Roblot C., Bonnin E., Larsen D.S., Morel-Rouhier M., Girardet J.M., Lefebvre V., Sénéchal F., Mercadante D., & Pelloux J. (2023). Differences in the crystal structure of plant polygalacturonases specify enzymes’ dynamics and processivities to fine-tune cell wall pectins. The Plant Cell. https://doi.org/10.1101/2022.06.22.497136

Schilling, M., Maia-Grondard, A., Baltenweck, R., Robert, E., Hugueney, P., Bertsch, C., Farine, S., & Gelhaye, E. (2022). Wood degradation by Fomitiporia mediterranea M. Fischer: Physiologic, metabolomic and proteomic approaches. Frontiers in plant science13, 988709. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.988709

Sylvestre-Gonon, E., Morette, L., Viloria, M., Mathiot, S., Boutilliat, A., Favier, F., Rouhier, N., Didierjean, C., & Hecker, A. (2022). Biochemical and Structural Insights on the Poplar Tau Glutathione Transferase GSTU19 and 20 Paralogs Binding Flavonoids. Frontiers in molecular biosciences9, 958586. https://doi.org/10.3389/fmolb.2022.958586

Narmuratova Z., Hentati F., Girardet J.M., Narmuratova M., & Cakir-Kiefer C. (2022). Equine lactoferrin: Antioxidant properties related to divalent metal chelation. LWT Food Science and Technology, 161, 113426.

Joffe, R., Berthe, A., Jolivet, Y., & Gandin, A. (2022). The response of mesophyll conductance to ozone-induced oxidative stress is genotype-dependent in poplar. Journal of experimental botany, erac154. Advance online publication. https://doi.org/10.1093/jxb/erac154

Su, L., Hôtel, L., Paris, C., Chepkirui, C., Brachmann, A. O., Piel, J., Jacob, C., Aigle, B., & Weissman, K. J. (2022). Engineering the stambomycin modular polyketide synthase yields 37-membered mini-stambomycins. Nature communications13(1), 515. https://doi.org/10.1038/s41467-022-27955-z

Pacetti, A., Moretti, S., Pinto, C., Compant, S., Farine, S., Bertsch, C., & Mugnai, L. (2021). Trunk Surgery as a Tool to Reduce Foliar Symptoms in Diseases of the Esca Complex and Its Influence on Vine Wood Microbiota. Journal of fungi (Basel, Switzerland)7(7), 521. https://doi.org/10.3390/jof7070521

El Hajj S., Sepúlveda-Rinconi T., Girardet J.M., Cakir-Kiefer C., Stefan L., Zapata-Montoya J.E., Boshi-Muller S., Gaucher C. & Canabady-Rochelle L. (2021) Electrically switchable nanolever technology for the screening of metal-chelating peptides in hydrolysates. Journal of Agricultural and Food Chemistry69, 8819-8827.

Bchini R., Girardet J.M., Sormani R., Gelhaye E. & Morel-Rouhier M. (2021). Oxidized glutathione promotes association between Eukaryotic Translation Elongation Factor 1Bγ and Ure2p glutathione transferase from Phanerochaete chrysosporium. The FEBS Journal, 288, 2956-2969.Bchini R., Girardet J.M., Sormani R., Gelhaye E. & Morel-Rouhier M. (2021). Oxidized glutathione promotes association between Eukaryotic Translation Elongation Factor 1Bγ and Ure2p glutathione transferase from Phanerochaete chrysosporium. The FEBS Journal, 288, 2956-2969.

El Hajj S., Sepúlveda-Rinconi T., Selmeczi K., Paris C., Giraud T., Csire G., Stefan L., Girardet J.M., Desobry S., Bouhallab S., Muhr L., Gaucher C. & Canabady-Rochelle L. (2021) Chapter 19, Applications in Nutrition: Mineral-Binding. In Biologically Active Peptides 1st Ed.: From basic science to applications for human health (Fidel Toldrá and Jianping Wu, Eds.), pp 455-494Elsevier. Academic Press.

Cappele J., Mohamad Ali A., Leblond-Bourget N., Mathiot S., Dhalleine T., Payot S., Savko M., Didierjean C., Favier F., Douzi B. (2021). Structural and Biochemical Analysis of OrfG: The VirB8-like Component of the Conjugative Type IV Secretion System of ICESt3 From Streptococcus thermophilus. Frontiers in Molecular Biosciences, 80, 103389.

Perrot T., Schwartz M., Deroy A., Girardet J.M., Kohler A., Morel-Rouhier M., Favier F., Gelhaye E. & Didierjean C. (2021). Diversity of Omega Glutathione Transferases in mushroom-forming fungi revealed by phylogenetic, transcriptomic, biochemical and structural approaches. Fungal Genetics and Biology, 148, 103506.

Risser, F., Collin, S., Dos Santos-Morais, R., Gruez, A., Chagot, B., & Weissman, K. J. (2020). Towards improved understanding of intersubunit interactions in modular polyketide biosynthesis: Docking in the enacyloxin IIa polyketide synthase. Journal of structural biology212(1), 107581. https://doi.org/10.1016/j.jsb.2020.107581

Kammerscheit X., Hecker A., Rouhier N., Chauvat F. & Cassier-Chauvat C. (2020). Methylglyoxal Detoxification Revisited: Role of Glutathione Transferase in Model Cyanobacterium Synechocystis sp. Strain PCC 6803. Molecular Biology and Physiology, 11, e00882-20.

Roret T., Alloing G., Girardet J.M., Perrot T., Dhalleine T., Couturier J., Frendo P., Didierjean C. & Rouhier N. (2020). Sinorhizobium meliloti YrbA binds divalent metal cations using two conserved histidines. Biosci. Reports, 40, BSR20202956

Delannoy M., Girardet J.-M., Djelti F., Yen F.T. & Cakir-Kiefer C. (2020). Affinity of chlordecone and chlordecol for human serum lipoproteins. Environmental Toxicology and Pharmacology, 80, 103486.

Vicente C.M., Girardet J.M., Hôtel L. & Aigle B. (2020). Molecular dynamics to elucidate the DNA-binding activity of AlpZ, a member of the gamma-butyrolactone receptor family in S. ambofaciens. Frontiers in Microbiology: Antimicrobials, Resistance and Chemotherapy, 11, 1255.

Perrot T., Schwartz M., Saiag F., Salzet G., Dumarcay S., Favier F., Gerardin P., Girardet J.M., Sormani R., Morel-Rouhier M., Amusant N., Didierjean C. & Gelhaye E. (2018). Fungal glutathione transferases as tools to explore the chemical diversity of Amazonian wood extractives. ACS Sustainable Chemistry & Engineering, 6, 13078-13085

Responsables

Référent(e)s équipements

Assistant de prévention

Franck SAULNIER

franck.saulnier@univ-lorraine.fr

Portrait de Badreddine DOUZI, référent ultracentrifugeuse pour la plateforme ASIA.

Référent Ultracentrifugeuse

Badreddine DOUZI

badreddine.douzi@inrae.fr

Portrait de Sylvain DARNET, référent chromatographie sur couche mince pour la plateforme ASIA.

Référent HPTLC et bio-informatique

Sylvain DARNET

sylvain.darnet@univ-lorraine.fr

Plateforme ASIA
Faculté des Sciences et Technologies
Campus Aiguillettes
BP 70239
54506 Vandœuvre-lès-Nancy Cedex

ASIA est située à l’entrée 1B de la FST,
au niveau 6.

Téléphone : 03.72.74.51.66